通常,對(duì)于研究人員來說,選擇單抗還是多抗作為您的研究是項(xiàng)目啟動(dòng)的第一步。有許多因素需要考慮,包括需要抗體量,抗體的應(yīng)用和對(duì)抗體特異性的要求。單抗和多抗有著各自的優(yōu)缺點(diǎn)和適用性,在選擇時(shí),除了要考慮抗體的應(yīng)用之外,還要考慮宿主是否適合。

單抗多抗的區(qū)別

概念:

  • 單克隆抗體:由單一B淋巴細(xì)胞產(chǎn)生的高度均一、僅識(shí)別某一特定抗原表位的抗體。
  • 多克隆抗體:用一種含有多種抗原決定簇的抗原免疫動(dòng)物,可刺激機(jī)體產(chǎn)生多個(gè)B淋巴細(xì)胞產(chǎn)生針對(duì)多種抗原表位的不同抗體。所獲得的免疫血清是含有多種抗體的混合物。

單抗多抗區(qū)別

單抗多抗制備流程:

  • 單抗制備:抗原免疫動(dòng)物→獲得B淋巴細(xì)胞→B細(xì)胞與骨髓瘤細(xì)胞融合→獲得雜交瘤細(xì)胞→HAT培養(yǎng)基篩選成功融合的雜交瘤細(xì)胞→亞克隆獲得單克隆→挑選最好的克隆進(jìn)行放大培養(yǎng)→獲得單克隆抗體
  • 多抗制備:抗原免疫動(dòng)物→收集血清→純化獲得多克隆抗體

單抗多抗制備流程

單抗VS. 多抗

抗體類型 優(yōu)點(diǎn) 缺點(diǎn) 免疫宿主
單克隆抗體
  • 批次間一致性高
  • 特異性高
  • 一旦獲得雜交瘤,即可快速制備抗體
  • 抗體數(shù)量和可用性不受限制
  • 生產(chǎn)時(shí)間更長
  • 需要較多的免疫抗原
  • 開發(fā)成本較高
  • 使用多肽免疫較為困難
  • 應(yīng)用范圍有限
  • 親和力低
  • 小鼠
  • 兔子
多克隆抗體
  • 快速生產(chǎn)時(shí)間
  • 開發(fā)成本較低
  • 親和力高
  • 可用于多種應(yīng)用
  • 需要較少的免疫抗原
  • 可免疫多種宿主
  • 批次間差異性難以控制
  • 獲得數(shù)量有限(免疫宿取決于主出血量)
  • 小鼠
  • 兔子
  • 大鼠
  • 山羊
  • 綿羊
  • 駱駝

單抗成本高,周期長,但特異性好;多抗成本低,周期短,但特異性不及單抗。如果您時(shí)間緊迫,費(fèi)用有限,但又需要特異性高的抗體,單特異性抗體可能是您最好的選擇(詳細(xì)了解單特異性抗體,請(qǐng)與我們聯(lián)系)。

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免疫宿主的選擇

宿主 優(yōu)點(diǎn) 缺點(diǎn) 適用生產(chǎn)
小鼠
  • 需要較少的抗原量
  • 可直接對(duì)血清進(jìn)行初始分析
  • 適合生產(chǎn)單抗
  • 獲得血清量少
  • 不適合肽免疫
  • 單抗
大鼠
  • 需要較少的抗原量
  • 可直接對(duì)血清進(jìn)行初始分析
  • 適合小量生產(chǎn)
  • 適合鼠抗生產(chǎn)
  • 獲得血清量少
  • 小量多抗
  • 最為常見的宿主
  • 適合蛋白或多肽抗原免疫
  • 可直接對(duì)血清進(jìn)行初始分析
  • 不適用于高度保守的哺乳動(dòng)物蛋白抗原
  • 單抗/多抗
山羊
  • 獲得較大量的血清
  • 直接對(duì)血清進(jìn)行分析
  • 屬于大型哺乳動(dòng)物宿主
  • 需要較多的抗原量
  • 不適用修飾肽免疫
  • 大量多抗
  • 特異性高
  • 適中的成本
  • 高度保守的哺乳動(dòng)物蛋白的良好替代品
  • 抗體從蛋黃中純化獲得
  • 很難從蛋黃中純化獲得抗體
  • 不太適合多肽免疫
  • 高度保守的哺乳動(dòng)物蛋白抗原
  • 多抗
駱駝
  • 僅有重鏈抗體
  • 生產(chǎn)納米抗體
  • 大型哺乳動(dòng)物宿主
  • 不適合小分子和多肽抗原免疫
  • 單域抗體(納米抗體)

抗體的應(yīng)用

酶聯(lián)免疫吸附實(shí)驗(yàn) (ELISA)

ELISA的實(shí)驗(yàn)原理是基于抗體/抗原的特異性結(jié)合,它不僅能夠?qū)μ囟ǖ牡鞍走M(jìn)行定量分析,還可以研究分子之間的相互作用或其他特性。將針對(duì)靶蛋白的抗體與酶偶聯(lián)。在加入底物時(shí),這種酶催化底物生成有色產(chǎn)物。通過分光光度計(jì)的測定,便可以知道樣品中抗原的濃度。常見的ELISA類型有四種:直接ELISA,間接ELISA,夾心ELISA和競爭ELIS。

Western Blot蛋白免疫印跡(WB)

WB通常被用來確定樣品間蛋白的相對(duì)表達(dá)水平,還可以確定目標(biāo)蛋白的分子量大小,這有利于我們對(duì)蛋白的翻譯后修飾過程進(jìn)行研究。根據(jù)分子量大小的不同,通過凝膠電泳分離蛋白質(zhì)。接著,將蛋白被轉(zhuǎn)移到PVDF/NC膜上,隨后用抗體來檢測,確定樣品中蛋白的含量。

免疫沉淀IP/免疫共沉淀 Co-IP

免疫沉淀是分離純化單一或復(fù)合蛋白的最常用的一種方式。抗體被固定在固相基質(zhì)上(如磁珠),從復(fù)雜溶液中捕獲抗原。免疫共沉淀,是在捕獲抗原的同時(shí),驗(yàn)證溶液中是否存在具有相互作用的物質(zhì)。

免疫組織化學(xué)(IHC)

免疫組化是利用抗原與抗體特異性結(jié)合的原理,通過化學(xué)反應(yīng)使標(biāo)記抗體的顯色劑顯色來確定組織細(xì)胞內(nèi)抗原,對(duì)其進(jìn)行定位、定性及定量的研究。相比與WB和ELISA,它的定量分析應(yīng)用較少,但是在完整組織中對(duì)于蛋白表達(dá)的分析更有優(yōu)勢。IHC染色是通過抗體識(shí)別靶蛋白實(shí)現(xiàn)的。抗原抗體復(fù)合物能夠通過酶促反應(yīng)或者熒光來實(shí)現(xiàn)可視化。這些底物可以直接偶聯(lián)到一抗或二抗上。

免疫細(xì)胞化學(xué) (ICC)

ICC通常使用熒光標(biāo)記的抗體來研究蛋白的亞細(xì)胞分布。與IHC相比,該技術(shù)提供了更高的空間分辨率,因?yàn)榕囵B(yǎng)的細(xì)胞不會(huì)有組織樣本的復(fù)雜環(huán)境。

流式細(xì)胞術(shù)(FCM)細(xì)胞分選(FACS)

流式細(xì)胞術(shù)是一種在細(xì)胞分子水平上通過單克隆抗體對(duì)單細(xì)胞或其他生物粒子進(jìn)行定量分析和分選的檢測手段。它可以高速分析上萬個(gè)細(xì)胞,并能同時(shí)從一個(gè)細(xì)胞中測得多個(gè)參數(shù),包括細(xì)胞大小和細(xì)胞表面以及細(xì)胞內(nèi)標(biāo)記物的表達(dá)量。細(xì)胞分選(FACS)是一種更復(fù)雜的系統(tǒng),將細(xì)胞從多細(xì)胞樣品中分離出來。該方法用抗體標(biāo)記細(xì)胞,同時(shí)被用的抗體被熒光標(biāo)記或連接免疫磁珠,利用熒光和免疫磁珠的特性來分離細(xì)胞。